ETAPAS 2LV(M)

ETAPAS:

a) ANALITICA:

Este paso es clave en la Planificación Estratégica porque nos va a permitir conocer cuáles son
los principales problemas con los que nos enfrentamos, y a partir de los cuales deberemos
buscar las soluciones específicas. Requiere de un análisis realista, en él se basarán luego las
estrategias con las que se intentará revertir la situación apuntando al logro de los objetivos
propuestos.

b) PREANALITICA:

Asegura que se efectue con calidad todo procedimiento anterior a la prueba tanto dentro como fuera de laboratorio.

c) POSTANALITICA:

Ausente o deficiente verificacion de la identidad y de los resultados de serologia, de las unidades de plasma que se envian al Laboratorio de los Hemoderivados.

PRUEBA DE AGLUTINACION EN SUERO SANGUINEO practica 8-9 2LV(M)

PRUEBA DE AGLUTINACION EN SUERO SANGUINEO practica 8-9

MÉTODO DE PRUEBA RÁPIDA EN PLACA.

Ejemplo de técnicaa) Al paciente se le realiza una venopunción, extrayendo la sangre en un tubo sin anticoagulante (Tapón rojo), y es centrifugada por 10 minutos a 3000 revoluciones por minuto. Se separa el suero el cual se utiliza para la determinación de los anticuerpos (puede extraerse con pipetas semiautomáticas).Marcar en una placa de vidrio correctamente indicando el antígeno que se esté usando:(En este caso serian los antígenos):Tífico “O” - Salmonella typhi; Antígeno somático, pH: 6.5 ± 1.0Tífico “H” - Salmonella typhi; Antígeno flagelar, pH: 6.5 ± 1.0

NOTA: El reactivo así como los sueros, deben alcanzar la temperatura ambiente para comenzar la prueba.PROCEDIMIENTO:1. Depositar en sitios diferentes de la placa las siguientes cantidades del suero a analizar: 0.08mL, 0.04mL, 0.02mL, 0.01mL y 0.005 mL (EL SUERO DEBE ESTAR TOTALMENTE CLARO).2. Agitar el antígeno a utilizar para tener una suspensión uniforme.3. Añadir 30 mL de la suspensión de antígeno a cada una de las diferentes cantidades de suero. Se recomienda utilizar pipetas automáticas (el gotero incluido proporciona una gota de 30-40 mL).4. Mezclar el antígeno y el suero utilizando un aplicador diferente para cada una de las cantidades de suero.5. Girar la placa manualmente o utilizando un agitador mecánico (120 rpm) durante 2 minutos.6. Realizar la lectura utilizando una fuente de luz directa y observar la aglutinación macroscópica.7. Se recomienda incluir controles Positivo y Negativo

INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOSEl grado de aglutinación se registra como sigue:4+ Aglutinación del 100% de los organismos3+ Aglutinación del 75% de los organismos2+ Aglutinación del 50% de los organismos1+ Aglutinación del 25% de los organismos- Aglutinación del 0% de los organismosLIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO1. Algunos sueros normales pueden dar un titulo de 1:20 a 1:40 y hasta 1:80 pero esto puede ser debido a vacunaciones o alguna infección anterior. No siempre se presenta producción de aglutininas en infecciones bacterianas.2. Se pueden producir reacciones cruzadas de aglutininas debido a vacunaciones para ciertas enfermedades. La vacuna tífica puede producir aglutininas contra antígenos Proteus.3

CONCLUSIÓN:El diagnóstico exacto de la enfermedad depende del acercamiento entre el laboratorio clínico y el médico, ya que la elevación del título en la muestra de suero con sintomatología reciente y la muestra de suero en fase convaleciente indicará la exactitud del diagnóstico. El paciente con salmonelosis cursa con un cuadro donde aparecen escalofríos , cefalea, náuseas, anorexia, tos y diarrea o estreñimiento. La fiebre es prolongada y varía de 38,5ºC a 40ºC. Entre un 20-40% presentan dolor abdominal. Se sugiere que se le realice al paciente un coprocultivo (cultivo de las heces fecales). Debe crecer salmonella, identificándose la especia por medio de pruebas bioquímicas.

TAREA: TIPOS DE BACTERIAS ESFERAS, BACILIUS Y ESPIRAL/

TAREA: TIPOS DE BACTERIAS ESFERAS, BACILIUS Y ESPIRAL?

ESFERA: Aquellas bacterias que son cocos y que se agrupan en pares se les conoce como diplococos, cuando se forman en grupos mayores formando una cadena se les conoce como estretococos. Los estafilococos son agragados o grupos de celulas.

BACILIUS: Son bacterias alrgadas, en forma de baston. Los bacilius que se agrupan en pares son conocidos como diplobacilos, aquellos que se agrupan formando cadenas alargadas se conocen como estraptobacilos.

ESPIRAL: Son bacterias que no caen en las dos clasificaciones anteriores y comoel nombre suguiere, tienen formas curvales. Dentro de esta clasificacion existen varios tipos como los son los espirilos (EN FORMA DE ESPIRAL FLEXIBLE), los espiroquetas (EN FORMA DE HELICE) y los vibrios (EN FORMA DE COMA).

OBSERVACION MICROSCOPICA practica No.7 2LV(M)

OBSERVACION MICROSCOPICA practica No.7

La laminilla ya preparada y lista se monta en el microscopio se asegura.

Con las pinsas de la platina y se observa a 100 x donde encontramos bacterias de esferas las cuales podemos encontrar de 1 hasta 4 juntas

TINCION DE GRAM PRACTICA nO.6 2LV(M)

TINCION DE GRAM PRACTICA No.6

primero empezamos esterilizando el asa para poner la mezcla en el porta objeto

Y asi pasarlas por el fuego. Después de eso las colocamos en las siguientes tinciones;Primero que hicimos fue poneder los mecheros para pasar los porta objeto con las muestras.

PARA ESO SE ISO LO SIGUIENTES PASOS:

1. colocar el frotis en solucion crital violeta durante 1min.

2. lavar con solucion yodada (lugol)

3. cubrir frotis con lugol durante 1 min.

4. enjuagar con alcohol hasta que no oscurra cristal violeta

5. lavar con h2o

6. constrastar con la solucion de fusina porl

7. lavar con h2o8. agregar una gota de aceite de inmercion

y ya las colocamos para observarlas en el microscopioPractica 6Tincion de gram

Primero que hicimos fue prneder los mecheros para pasar los porta objeto con las muestras.Bueno primero empezamos esterilizando el asa para poner la mescla en el porta objetoY asi pasarlas por el fuego. Después de eso las colocamos en las siguientes tinciones;

1. colocar el frotis en solucion crital violeta durante 1min.

2. lavar con solucion yodada (lugol)

3. cubrir frotis con lugol durante 1 min.

4. enjuagar con alcohol hasta que no oscurra cristal violeta

5. lavar con h2o

6. constrastar con la solucion de fusina porl

7. lavar con h2o8. agregar una gota de aceite de inmercion

y ya las colocamos para observarlas en el microscopio

TAREA: QUE ES UN FROTIS? 2LV(M)

TAREA: FROTIS

Un frotis de sangre es un proceso científico que consiste en el extendido de una gota de sangre en la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente.
Es más adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto con el anticoagulante, pues este podría alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienden a deformar las células de la sangre.

Su realización es de vital importancia para obtener una orientación de:

-La valoración de la estimulación eritropoyetica.
-Las anomalías en la maduración nuclear y citoplásmica de las células hemáticas.
-Los trastornos en la arquitectura de las células al formarse en la médula osea.
-Las alteraciones singulares en la forma de las células, que son una identificación especifica de algunas enfermedades.
-Algún indicador de los efectos nocivos de la quimioterapia y de la radioterapia.
-La diferenciación y recuento de los elementos celulares de la sangre.

ELABORACION DE UN FROTIS practica No.5 2LV(M)

ELABORACION DE UN FROTIS practica No.5

Se denomina frotis a la extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra o cultivo con objeto de separar lo más posible los microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida. Este frotis debe ser posteriormente fijado al vidrio del portaobjetos para poder aplicar los métodos habituales de tinción que permiten la observación al microscopio de las bacterias sin que la muestra sea arrastrada en los sucesivos lavados. La fijación de una extensión bacteriana hace que las bacterias queden inactivadas y adheridas al vidrio alterando lo menos posible la morfología y bacteriana y las posibles agrupaciones de células que pudiera haber.

Colocar una pequeña gota de agua en el centro de un portaobjetos limpio. Es necesaria muy poca cantidad de agua, por lo que se puede usar el asa de siembra, ya que en el extremo curvo de su filamento queda retenida una mínima gota de agua, que resulta suficiente

Flamear el asa de siembra, tomar, en condiciones asépticas, una pequeña cantidad del cultivo bacteriano en medio sólido y transferirlo a la gota de agua. Remover la mezcla con el asa de siembra hasta formar una suspensión homogénea que quede bastante extendida para facilitar su secado.Si la muestra se toma de un cultivo en medio líquido, no es necesario realizar los dos primeros pasos ya que basta con colocar y extender una gota de la suspensión bacteriana, que se toma con el asa de siembra, directamente sobre el portaobjetos

Esperar hasta que el líquido se evapore o acelerar su evaporación acercando el porta a la llama del mechero. En este caso hay que tener mucha precaución de no calentar demasiado el porta pues las células pueden deformarse o romperse.

OBSERVACION MICROSCOPICA BACTERIOLOGICA DE MEDIO DE CULTIVO practica No.4 2LV(M)

OBSERVACION MICROSCOPICA BACTERIOLOGICA DE MEDIO DE CULTIVO practica No.4

1-Nombre del medio: agar salmonella y shiga.
Nombre de la siembra: siembra de sigsne
Nombre de la muestra: sangre sentrifugada
Observaciones:en este medio no a habido resultados de colonias mas que Vapor de agua .
2- Nombre del medio: agar verde brillante
Nombre de la siembra: siembra por dispersión
Nombre de la muestra: orina (no centrifugada)
Observacuiones: no hubo resultados solo las marcas de la siembra.
3- Nombre del medio: agar de hierro de kligler
Nombre de la siembra: siembra de tapis
Nombre de la muestra: h2o de lechugaObservaciones: en esta caja hubo crecimiento de ongos de la lechuga.
4- Nombre del medio: agar de mac conkey
Nombre de la siembra: siembra exagonalNombre de la muestra: muestra interdental
Observación: en esta muestra hay pequenos puntitos de caries.
5- Nombre del medio: agar dextosa
Nombre de la siembra: siembra por estrias
Nombre de la muestra: raspado de piesObservación: vapor de h2o y pequenas manchitas.

DesarrolloEl día 28 de mayo del 2008 observamos a simple vista las siembras y tomamos no ta de cada una de allas. Nosotros como alumnos debemos observar como estan las colonias de bacteriasque crecen de 24 a 72 hrs.

TAREA: TECNICA DE EXTACCION SANGUINEA 2LV(M)

TAREA: TECNICA DE EXTACCION SANGUINEA

La extracción de sangre es un procedimiento médico muy usual para la detección de posibles enfermedades al realizar los oportunos análisis a la muestra de sangre obtenida. La sangre se extrae de una vena, usualmente de la parte interior del codo o del dorso de la mano.
El sitio de punción se limpia con un antiséptico y luego se coloca una banda elástica o un brazalete de presión alrededor del antebrazo con el fin de ejercer presión y restringir el flujo sanguíneo a través de la vena, lo cual hace que las venas bajo la banda se dilaten. Inmediatamente después, se introduce una aguja en la vena y se recoge la sangre en un frasco hermético o en una jeringa

Durante el procedimiento, se retira la banda para restablecer la circulación y, una vez que se ha recogido la sangre, se retira la aguja y se cubre el sitio de punción para detener cualquier sangrado. En función del tipo de análisis que se vaya a realizar es requisito haber suspendido el consumo de alimentos al menos ocho horas antes de la extracción; aunque este caso siempre lo ha de determinar el médico en el momento en que solicita dicha prueba.
Cuando se inserta la aguja para extraer la sangre, algunas personas sienten un dolor moderado, mientras que otras sólo sienten un pinchazo o sensación de picadura. Posteriormente, puede haber una sensación pulsátil. Algunas personas pueden sufrir mareos o desmayos debidos a la impresión que les causa, por lo que se recomienda estar sentado o tumbado durante la extracción.

SIEMBRA DE MEDIO DE CULTIVO practica No.3 2LV(M)

SIEMBRA DE MEDIO DE CULTIVO practica No.3

Primero sacamos 2 mecheros y los colocamos en el campo de esterilizaciónPara inclinar las cajas petris y comenzar a poner las muestras que son las siguientes:

-Orina

-SangreH2o de lechuga

-Raspado de pie

-Muestra interdental

Ya teniendo estas muestras, las colocamos en el medio de cultivo y empezamos abrirlas para colocar las muestras en cada caja petri.

Materiales:

-5 o 7 cajas petri de medio de cultivo.

-Asa bacteriologica

-Vaso de precipitado con 25ml. de agua destilada.

-2 mecheros de bunsen

-Papel para mesa de laboratorio

-Tape

-Algodon secoAlgodones con alcohol

-Tubo conico de plasticoMuestras para siembras:

-Saliva

-Muestra interdental

-Orina

-Agua preparada

-Verduras

-Muestra de sangre

Tecnica de extraccion sanguinea:

Materiales:

-Jeringa 5ml

.-Torundas de algodon alcoholosadas

-Torniquete

Se realiza asepxia y antisepxia del pliegue del brazo utilizando una torunda de algodon con alcohol.Una vez realizado se debe asegurar la aguja a la jeringadandole un pequeño giro hasta que quede apretado. Una vez lista la jeringa y limpia la zona del pliegue se aplica el torniquete en la parte media del brazo para hacer precion t obtener una vaso dilatacion del conducto sanguineo, se intruduce la jeringa y se extraen 2.5ml. de sangre la que depositaremos en un tubo con tapon rojo sin anticuagulante.No se retita el tapon del tubo se introduce la aguja en el.Se deja coagular la sangre y se toma el tiempo se mete a la centrifuga para separar el paquete del plasma.Una vez separado el paquete del plasma se trasvasa a un tubo de ensaye vacio.Se sembrara el liquido plasmatico en medio de cultivo utilizando la tecnica con varilla de cristal denominada siembra por dispercion.

TAREA:TECNICA DE ESTERILIZACION 2LV(M)

TAREA: TECNICA DE ESTERILIZACION (AUTOCLAVE)

Se esteriliza el producto a 15 tibras de presion y una temperaturade 120 grados centigrados durante 20 minutos.Una vez terminada la esterilizacion se libera del autoclave, se entrega a las mesas y se llenara el vaceado en cajas petri.Para el vaceado en cajas petri se reqiere un campo de esterilizacion en cada mesa y 2 mecreros, para que este en el centro del campo de esterilizacion.Se utiliza caso precipitado de 50 ml. del cual se parara por forma breve en el fuego por la boquilla para que este esterilizado, se le vierte el producto en cantidad requerida y se va a la caja petri dejandola abierta con su tapa sobreencimada hasta que enfrie, esto se da todas las veces necesarias hasta que sea el llenado de capas.Ya estando solido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriados y se etiqueta

MEDIO DE CULTIVO-ESTERILIZACION PRACTICA No.1-2 2LV(M)

MEDIO DE CULTIVO "AZUL DE METILENO"-ESTERILIZACIÓN practica No.1

1-Se debe solicitar en el laboratorio de análisis clínicos un formato para anotar los materiales que se utilizaran en la en la realización de un medio de cultivo.
2-El alumno debe de tener su equipo de bioseguridad completo.
3-vestir la mesa de laboratorio con papel blanco .
4-Una persona del equipo o del equipo debe de verificar que este la linea de gas LP.Para ello se debe de conectar los mecheros y abrir las válvulas que se encuentran de bajo de la meza.
5-Una vez verificado el gas se habilita el equipo de esterilización (AUTOCLAVE) al cual se le debe introducir agua destilada para llevar acabo la esterilización por calor húmedo.

DESARROLLO

Pesamos todos los materiales y para saver cuanto medio de cultivo que vamos a colar en las cajas petri para lo cual tuvimos que hacer una regla de 3: (30)(19)/1000=0.68x7=[4.7], y para preparar el medio de cultivo utilizamos 133 ml de agua destilada y le agragamos los 4.7 gr del medio de cultivo.

Batimos hasta que no quedaran brumos lo batimos con una barrilla de cristal y y prendimos los mecheros y nos colocamos el guante para altas temperaturas de color anaranjado .Hicimos la mezcla con un muñequeosuave a fuego lento hasta que hiciera ebullicion